Preview

Бюллетень сибирской медицины

Расширенный поиск

Аденозинзависимая регуляция экспрессии паракринных факторов в моноцитах венозной крови человека

https://doi.org/10.20538/1682-0363-2011-3-54-61

Полный текст:

Аннотация

Проведено исследование экспрессии поверхностных маркеров: CD1a, CD14, CD209, а также экспрессии мРНКаденозиновых рецепторов типов А1, А2А, А2В и А3, интерлейкина-6 и -8 (ИЛ-6 и ИЛ-8), фактора роста эндотелия сосудов (vascular endothelial growth factor — VEGF) в моноцитах человека. В данных клетках выявлено наличие широкого спектра индивидуальных различий в аденозинзависимой регуляции экспрессии паракринных факторов (ИЛ-6, ИЛ-8 и VEGF).

Об авторах

С. В. Рыжов
Университет Вандербилта
Соединённые Штаты Америки
канд. мед. наук, ассистент-профессор отделения кардиологии медицинского факультета


К. С. Юрьева
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
студентка 6-го курса медико-биологического факультета


К. В. Горемыкин
Сибирский государственный медицинский университет
Россия

Горемыкин Константин Викторович, аспирант кафедры биохимии и молекулярной биологии 

тел. 8-923-418-1510



Е. В. Короткая
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
студентка 6-го курса медико-биологического факультета


И. В. Салтыкова
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
канд. мед. наук, мл. научный сотрудник ЦНИЛ


Ю. А. Яковлева
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
студентка 6-го курса медико-биологического факультета


Е. С. Куликов
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
канд. мед. наук, ассистент кафедры госпитальной терапии с курсом спортивной медицины и реабилитации


О. С. Фёдорова
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
канд. мед. наук, ассистент кафедры факультетской педиатрии с курсом детских болезней лечебного факультета


Е. Э. Кремер
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
аспирант кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии, мл. науч. сотрудник ЦНИЛ


Н. С. Фаттахов
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
студент 4-го курса медико-биологического факультета


А. Э. Сазонов
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
д-р мед. наук, зам. зав. ЦНИЛ


Список литературы

1. Геренг Е.А., Суходоло И.В., Плешко Р.И. и др. Морфологические и биохимические маркеры воспалительных реакций в слизистой оболочке бронхов при тяжелой форме бронхиальной астмы и хронической обструктивной болезни легких // Бюл. сиб. медицины. 2009. Т. 8, № 3. С. 11—16.

2. Маянский Д.Н. Хроническое воспаление. М.: Медицина, 1991. 270 с.

3. Наследникова И.О., Рязанцева Н.В., Новицкий В.В. Молекулярные основы противовирусной стратегии организма. Томск: Из-во Том. ун-та, 2005. 128 с.

4. Рязанцева Н.В., Наследникова И.О., Зима А.П. и др. Молекулярные механизмы изменения продукции ФНО-α мононуклеарами крови при хроническом вирусном гепатите С // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2005. Т. 139, № 2. С. 191—195.

5. Уразова О.И., Новицкий В.В., Помогаева А.П. Мононуклеары крови при инфекционном мононуклеозе у детей. Томск: Изд-во Том. ун-та, 2003. 166 с.

6. Ben Addi A., Lefort A., Hua X. Modulation of murine dendritic cell function by adenine nucleotides and adenosine: Involvement of the A2B receptor // Eur. J. Immunol. 2008. V. 38. P. 1610—1620.

7. Bruns R.F., Lu G.H., Pugsley T.A. Characterization of the A2 adenosine receptor labeled by [3H]NECA in rat striatal membranes // Mol. Pharmacol. 1986. V. 29. P. 331—346.

8. Clark A.N., Youkey R., Liu X. et al. A1 adenosine receptor activation promotes angiogenesis and release of VEGF from monocytes // Circ Res. 2007. V. 101. № 11. P. 1130—1108.

9. Eue I., Pietz B., Storck J. et al. Transendothelial migration of 27E10+ human monocytes // Int. Immunol. 2000. № 12. P. 1593—1604.

10. Fredholm B.B. Adenosine, an endogenous distress signal, modulates tissue damage and repair // Cell Death Differ. 2007. V. 14. P. 1315—1323.

11. Fredholm B.B., Ijzerman A.P., Jacobson K.A. et al. International Union of Pharmacology. XXV. Nomenclature and classification of adenosine receptors // Pharmacol. Rev. 2001. V. 53. P. 527—552.

12. Feoktistov I., Biaggioni I. Adenosine A2b receptors evoke interleukin-8 secretion in human mast cells. An enprofyllinesensitive mechanism with implications for asthma // J. Clin. Invest. 1995. V. 96, № 4. P. 1979—1986.

13. Gessi S., Fogli E., Sacchetto V. et al. Adenosine modulates HIF-1{alpha}, VEGF, IL-8, and foam cell formation in a human model of hypoxic foam cells // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2010. V. 30, № 1. P. 90—97.

14. Haskó G., Csóka B., Németh Z.H. et al. A2B adenosine receptors in immunity and inflammation // Trends in Immunology. 2009. V. 30, № 6. P. 263—270.

15. Haskó G., Linden J., Cronstein B., Pacher P. Adenosine receptors: therapeutic aspects for inflammatory and immune diseases // Nat. Rev. Drug. Discov. 2008. № 7 (9). P. 759—770.

16. Jin X., Shepherd R.K., Duling B.R., Linden J. Inosine binds to A3 adenosine receptors and stimulates mast cell degranulation // J. Clin. Invest. 1997. V. 100. P. 2849—2857.

17. Köhl R., Preiss S., von Knethen A., Brüne B. Oxidized lowdensity lipoprotein depletes PKCalpha and attenuates reactive oxygen species formation in monocytes/macrophages // Cardiovasc. Res. 2006. V. 71, № 3. P. 574—585.

18. Lambrecht B.N. Lung dendritic cells: targets for therapy in allergic disease // Curr. Mol. Med. 2008. № 8 (5). P. 393—400.

19. Le Moine O., Stordeur P., Schandené L. et al. Adenosine enhances IL-10 secretion by human monocytes // J. Immunol. 1996. V. 156, № 11. P. 4408—4414.

20. Lim H.S., Patel J.V., Lip G.Y. Reactive oxygen species production by circulating monocytes: insights from pathophysiology to clinical hypertension // J. Hum. Hypertens. 2006. V. 20, № 5. P. 307—309.

21. Linden J. Molecular approach to adenosine receptors: receptor-mediated mechanisms of tissue protection // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2001. V. 41. P. 775—787.

22. Meerschaert J., Furie M.B. The adhesion molecules used by monocytes for migration across endothelium include CD11a/CD18, CD11b/CD18, and VLA-4 on monocytes and ICAM-1, VCAM-1, and other ligands on endothelium // J. Immunol. 1995. V. 154. P. 4099—4012.

23. Novitskiy S.V., Ryzhov S., Zaynagetdinov R. Adenosine receptors in regulation of dendritic cell differentiation and function // Blood. 2008. V. 112, № 5. P. 1822—1831.

24. Parihar A., Eubank T.D., Doseff A.I. Monocytes and Macrophages Regulate Immunity through Dynamic Networks of Survival and Cell Death // J. Innate Immun. 2010. № 2 (3). P. 204—215.

25. Petit-Bertron A.F., Fitting C., Cavaillon J.M., Adib-Conquy M. Adherence influences monocyte responsiveness to interleukin10 // J. Leukoc. Biol. 2003. V. 73, № 1. P. 145—154.

26. Rees A.J. Monocyte and macrophage biology: an overview // Semin Nephrol. 2010. V. 30, № 3. P.216—233.

27. Relloso M., Puig-Kröger A., Muñiz Pello O. et al. DC-SIGN (CD209) expression is IL-4 dependent and is negatively regulated by IFN, TGF-β, and anti-inflammatory agents // J. Immunol. 2002. V. 168. P. 2634—2643.

28. Rothe G., Gabriel H., Kovacs E. et al. Peripheral Blood Mononuclear Phagocyte Subpopulations as Cellular Markers in Hypercholesterolemia // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 1996. V. 16. P. 1437—1447.

29. Schilling J.D., Martin S.M., Hunstad D.A. et al. CD14- and Toll-Like Receptor-Dependent Activation of Bladder Epithelial Cells by Lipopolysaccharide and Type 1 Piliated Escherichia coli // Infect. Immun. 2003. V. 71. P. 1470—1480.

30. Stachowska E. et al. Prostaglandin E2 (PGE2) and thromboxane A2 (TXA2) synthesis is regulated by conjugated linoleic acids (CLA) in human macrophages // J. Physiol. Pharmacol. 2009. V. 60. № 1. P. 77—85.

31. Tabengwa E.M., Wheeler C.G., Yancey D.A. et al. Alcoholinduced up-regulation of fibrinolytic activity and plasminogen activators in human monocytes // Alcohol Clin. Exp. Res. 2002. V. 26, № 8. P. 1121—1127.

32. Tilg H., Dinarello C.A., Mier J.W. IL-6 and APPs: antiinflammatory and immunosuppressive mediators // Immunol Today. 1997. V. 18, № 9. P. 428—432.

33. Van Calker D., Muller M., Hamprecht B. Adenosine regulates via two different types of receptors, the accumulation of cyclic AMP in cultured brain cells // J. Neurochem. 1979. V. 33. P. 999—1005.

34. Vasselon T., Hanlon W.A., Wright D.A, Detmers P.A. Toll— like receptor 2 (TLR2) mediates activation of stressactivated MAP kinase p38 // J. of Leukocyte Biology. 2002. V. 71. P. 503—510.

35. Zhang J.G., Hepburn L., Cruz G. et al. The role of adenosine A2A and A2B receptors in the regulation of TNF-alpha production by human monocytes // Biochem. Pharmacol. 2005. V. 69, №6. P. 883—889.

36. Zhou Y., Schneider D.J., Blackburn M.R. Adenosine signaling and the regulation of chronic lung disease // Pharmacol. Ther. 2009. V. 123. P. 105—116.


Для цитирования:


Рыжов С.В., Юрьева К.С., Горемыкин К.В., Короткая Е.В., Салтыкова И.В., Яковлева Ю.А., Куликов Е.С., Фёдорова О.С., Кремер Е.Э., Фаттахов Н.С., Сазонов А.Э. Аденозинзависимая регуляция экспрессии паракринных факторов в моноцитах венозной крови человека. Бюллетень сибирской медицины. 2011;10(3):54-61. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2011-3-54-61

For citation:


Ryzhov S.V., Yuryeva K.S., Goremykin K.V., Korotkaya Y.V., Saltykova I.V., Yakovleva Yu.A., Kulikov Y.S., Fyodorova O.S., Kremer Y.E., Fattakhov N.S., Sazonov A.E. Adenosine-dependent regulation of paracrine factors expression in human venous blood monocytes. Bulletin of Siberian Medicine. 2011;10(3):54-61. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2011-3-54-61

Просмотров: 127


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1682-0363 (Print)
ISSN 1819-3684 (Online)