Preview

Бюллетень сибирской медицины

Расширенный поиск

Нейтрофильные гранулоциты: новые лица старых знакомых

https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-1-30-37

Полный текст:

Аннотация

За последние несколько десятилетий, благодаря использованию новых технологий, был значительно расширен спектр функциональных возможностей нейтрофильных гранулоцитов. Детально изучен их эффекторный потенциал в отношении инфекционных агентов, включающий фагоцитоз, продукцию активных форм кислорода и азота, дегрануляцию с высвобождением многочисленных ферментов и антимикробных пептидов, образование внеклеточных ловушек. Однако установлено, что многие их тех факторов, которые нейтрофилы используют для прямого уничтожения патогенов, оказывают регулирующее влияние в отношении других клеток иммунной системы и самих нейтрофилов. Кроме того, при активации нейтрофилы способны синтезировать ряд биологически активных молекул de novo. Традиционно считаясь индукторами воспалительной реакции, нейтрофилы демонстрируют способность параллельно включать механизмы, влияющие на ограничение и разрешение воспаления. Амбивалентное, как хелперное, так и супрессорное, воздействие нейтрофилов на клетки врожденного и адаптивного иммунитета свидетельствует об их важной иммунорегуляторной роли как в условиях гомеостаза, так и при различных видах патологии, в частности при развитии злокачественных опухолей.

Об авторе

И. И. Долгушин
Южно-Уральский государственный медицинский университет (ЮУГМУ)
Россия

Долгушин Илья Ильич, доктор медицинских наук, профессор, академик РАН, президент, заведующий кафедрой микробиологии, вирусологии, иммунологии и клинической лабораторной диагностики, ЮУГМУ

454092, г. Челябинск, ул. Воровского, 64



Список литературы

1. Куликов В.А., Гребенников И.Н. Резольвины, протектины и марезины: новые медиаторы воспаления. Вестник Витебского государственного медицинского университета. 2012; 11 (1): 25–30.

2. Kruger P., Saffarzadeh M., Weber A.N., Rieber N., Radsak M., von Bernuth H., Benarafa C., Roos D., Skokowa J., Hartl D. Neutrophils: Between Host Defence, Immune Modulation, and Tissue Injury. PLoS Pathogens. 2015; 11 (3): e1004651. DOI: 10.1371/journal.ppat.1004651.

3. McDonald B., Pittman K., Menezes G.B., Hirota S.A., Slaba I., Waterhouse C.C., Beck P.L., Muruve D.A., Kubes P. Intravascular danger signals guide neutrophils to sites of sterile inflammation. Science. 2010; 330 (6002): 362–366.

4. Pillay J., Kamp V.M., van Hoffen E., Visser T., Tak T., Lammers J.W., Ulfman L.H., Leenen L.P., Pickkers P., Koenderman L. A subset of neutrophils in human systemic inflammation inhibits T cell responses through Mac- 1. The Journal of Clinical Investigation. 2012; 122 (1): 327–336.

5. Colom B., Bodkin J.V., Beyrau M., Woodfin A., Ody C., Rourke C., Chavakis T., Brohi K., Imhof B.A., Nourshargh S. Leukotriene B4-neutrophil elastase axis drives neu-trophil reverse transendothelial cell migration in vivo. Immunity. 2015; 42 (6): 1075–1086. DOI: 10.1016/j.immuni.2015.05.010

6. Woodfin A., Voisin M.B., Beyrau M., Colom B., Caille D., Diapouli F.M., Nash G.B., Chavakis T., Albelda S.M., Rainger G.E., Meda P., Imhof B.A., Nourshargh S. The junctional adhesion molecule (JAM-C) regulates polarized transendothelial migration of neutrophils in vivo. Nature Immunology. 2011; 12 (8): 761–769. DOI: 10.1038/ni.2062.

7. Jenne C.N., Liao S., Singh B. Neu-trophils: multitasking first responders of immunity and tissue homeostasis. Cell and Tissue Research. 2018; 371 (3): 395–397. DOI: 10.1007/s00441-018-2802-5.

8. Lopez-Lago M.A., Posner S., Thodima V.J., Molina A.M., Motzer R.J., Chaganti R.S. Neutrophil chemokines secreted by tumor cells mount a lung antimetastatic response during renal cell carcinoma progression. Oncogene. 2013; 32 (14): 1752–1760.

9. De Kleijn S., Langereis J.D., Leentjens J., Kox M., Netea M.G., Koenderman L., Ferwerda G., Pickkers P., Hermans P.W. IFN-γ-stimulated neutrophils suppress lymphocyte proliferation through ex-pression of PD-L1. PLoS ONE. 2013; (8): e72249.

10. Kruger P., Saffarzadeh M., Weber A.N., Rieber N., Radsak M., von Bernuth H., Benarafa C., Roos D., Skokowa J., Hartl D. Neutrophils: Between Host Defence, Immune Modulation, and Tissue Injury. PLoS Pathogens. 2015; 11 (3): e1004651. DOI: 10.1371/journal.ppat.1004651.

11. Cross A., Bucknall R.C., Cassatella M.A., Edwards S.W., Moots R.J. Synovial fluid neutrophils transcribe and express class II major histocompatibility complex molecules in rheumatoid arthritis. Arthritis and Rheumatology. 2003; 48, (10): 2796–2806.

12. Puga I., Cols M., Barra C.M., He B., Cassis L., Gentile M., Comerma L., Chorny A., Shan M., Xu W., Magri G., Knowles D.M., Tam W., Chiu A., Bussel J.B., Serrano S., Lorente J.A., Bellosillo B., Lloreta J., Juanpere N., Alameda F., Barу T., de Heredia C.D., Torán N., Catalа A., Torrebadell M., Fortuny C., Cusн V., Carreras C., Diaz G.A., Blander J.M., Farber C.M., Silvestri G., Cunningham-Rundles C., Calvillo M., Dufour C., Notarangelo L.D., Lougaris V., Plebani A., Casanova J.L., Ganal S.C., Diefenbach A., Arуstegui J.I., Juan M., Yagüe J., Mahlaoui N., Donadieu J., Chen K., Cerutti A. B cell–helper neutrophils stimulate immunoglobulin diversification and production in the marginal zone of the spleen. Nature Immunology. 2011; 13 (2): 170–180. DOI: 10.1038/ni.2194.

13. Valladeau J., Saeland S. Cutaneous dendritic cells. Seminars in Immunologyю. 2005;17 (4): 273–283.

14. Nicolás-Ávila J.Á., Adrover J.M., Hidalgo A. Neutrophils in homeostasis, immunity, and cancer. Immunity. 2017; 46 (1): 15–28. DOI: 10.1016/j.immuni.2016.12.012.

15. Powell D.R., Huttenlocher A. Neu-trophils in the tumor microenvironment. Trends in Immunology. 2016; 37 (1): 41–52. DOI: 10.1016/j.it.2015.11.008.

16. Shaul M.E., Fridlender Z.G. Cancer related circulating and tumor-associated neutrophils – subtypes, sources and function. The FEBS Journal. 2018. DOI: 10.1111/ febs.14524.

17. Fridlender Z.G., Albelda S.M. Tumor-associated neutrophils: friend or foe? Carcinogenesis. 2012; 33 (5): 949– 955. DOI: 10.1093/carcin/bgs123.

18. Singhal S., Bhojnagarwala P.S., O’Brien S., Moon E.K., Garfall A.L., Rao A.S., Quatromoni J.G., Stephen T.L., Litzky L., Deshpande C., Feldman M.D., Hancock W.W., Conejo-Garcia J.R., Albelda S.M., Eruslanov E.B. Origin and role of a subset of tumor-associated neutrophils with antigen-presenting cell features in early-stage human lung cancer. Cancer Cell. 2016; 30 (1): 120–135. DOI: 10.1016/j.ccell.2016.06.001.

19. Семенова А.Б., Казачков Е.Л., Долгушин И.И., Важенин А.В. Формирование нейтрофильными гранулорцитами сетей внеклеточной ДНК как дополнительный диагностический критерий степени злокачественности карцином молочной железы. Уральский медицинский журнал. 2016; 3 (136): 70–73.

20. Park S.A., Hyun Y.M. Neutrophil ex-travasation cascade: what can we learn from two-photon intravital im-aging? Immune Network. 2016; 16 (6): 317–321.

21. Grayson P.C., Kaplan M. At the Bench: Neutrophils extracellular traps (NETs) highlight novel aspects of innate immune system involvement in autoimmune diseases. J. Leukoc Biol. 2016; 99 (2): 253–264. DOI: 10.1189/jlb.5BT0615-247R.

22. Escors D., Kochan G. Myeloid-derived suppressor cells and their “inconvenient” plasticity. Journal of Immunological Sciences. 2018; 2 (2): 42–47.


Для цитирования:


Долгушин И.И. Нейтрофильные гранулоциты: новые лица старых знакомых. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(1):30-37. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-1-30-37

For citation:


Dolgushin I.I. Neutrophil granulocytes: new faces of old acquaintances. Bulletin of Siberian Medicine. 2019;18(1):30-37. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-1-30-37

Просмотров: 151


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1682-0363 (Print)
ISSN 1819-3684 (Online)