Preview

Бюллетень сибирской медицины

Расширенный поиск

Обнаружение и генотипирование Anaplasma phagocytophilum в клещах I. persulcatus и D. reticulatus , собранных в г. Томске в 2015–2016 гг.

https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-2-89-98

Полный текст:

Аннотация

Введение. Выявление первых случаев заболевания клещевым гранулоцитарным анаплазмозом человека в Российской Федерации, обнаружение генетических маркеров анаплазмозов в иксодовых клещах, регистрация значительного количества случаев различных клещевых инфекций на юге Западной Сибири ставят вопрос о возможной циркуляции возбудителя анаплазмоза в г. Томске и его пригородах.
Цель исследования. Изучение распространения и видового разнообразия A. phagocytophilum в иксодовых клещах на территории Томской области.
Материалы и методы. Проведен анализ 690 индивидуальных образцов личинок и имаго иксодовых клещей видов Ixodes persulcatus (n = 530) и Dermacentor reticulatus (n = 160), собранных в 2015–2016 гг. на территории городских и пригородных биотопов г. Томска. Первичный скрининг клещей на наличие генетического материала A. phagocytophilum проводили с помощью двухраундовой полимеразной цепной реакции в присутствии родоспецифичных праймеров из области гена 16S рРНК. Для положительных изолятов осуществлялось амплифицирование фрагмента (1 220 пар нуклеотидов) groESL-оперона белков теплового шока с последующим определением нуклеотидной последовательности фрагмента гена и проведением филогенетического анализа.
Результаты. Уровень инфицированности A. phagocytophilum у личинок I. persulcatus составил (1,2 ± 0,6)%; у половозрелых особей I. persulcatus – (1,8 ± 0,7)%; у половозрелых особей D. reticulatus–(0,6 ± 0,3)%. Анализ нуклеотидной последовательности фрагмента groESL-оперона для девяти изолятов подтвердил обнаружение генетического материала возбудителя гранулоцитарного анаплазмоза. Филогенетический анализ показал, что все изоляты относятся к первой группе «нового» кластера A. phagocytophilum.
Вывод. Возбудитель гранулоцитарного анаплазмоза человека впервые обнаружен в клещах I. рersulcatus, собранных в городских и пригородных биотопах г. Томска, и D. reticulatus из городского биотопа.

Об авторах

М. Ю. Карташов
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии (ГНЦ ВБ) «Вектор»; Национальный исследовательский Новосибирский государственный университет (НГУ)
Россия

Карташов Михаил Юрьевич, канд. биол. наук, ст.науч. сотрудник

630559, Новосибирская область, р.п. Кольцово

630090, г. Новосибирск, ул. Пирогова, 2



Т. П. Микрюкова
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии (ГНЦ ВБ) «Вектор»
Россия
Микрюкова Тамара Петровна, канд. биол. наук, ст. науч. сотрудник

630559, Новосибирская область, р.п. Кольцово


Н. С. Москвитина
Национальный исследовательский Томский государственный университет (НИ ТГУ)
Россия
Москвитина Нина Сергеевна, д-р биол. наук, профессор, зав. кафедрой зоологии позвоночных

634050, г. Томск, пр. Ленина, 36


Е. И. Кривошеина
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии (ГНЦ ВБ) «Вектор»
Россия
Кривошеина Екатерина Ильинична, стажер-исследователь

630559, Новосибирская область, р.п. Кольцово


А. И. Кузнецов
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии (ГНЦ ВБ) «Вектор»
Россия
Кузнецов Александр Иванович, стажер-исследователь

630559, Новосибирская область, р.п. Кольцово


В. Н. Романенко
Национальный исследовательский Томский государственный университет (НИ ТГУ)
Россия
Романенко Владимир Никифорович, д-р биол. наук, профессор, зав. кафедрой зоологии беспозвоночных

634050, г. Томск, пр. Ленина, 36


Н. П. Большакова
Национальный исследовательский Томский государственный университет (НИ ТГУ)
Россия
Большакова Наталия Павловна, канд. биол. наук,ст. преподаватель, науч. сотрудник

634050, г. Томск, пр. Ленина, 36


В. А. Терновой
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии (ГНЦ ВБ) «Вектор»
Россия

Терновой Владимир Александрович, канд. биол. наук,зав. лабораторией

630559, Новосибирская область, р.п. Кольцово



В. Б. Локтев
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии (ГНЦ ВБ) «Вектор»; Национальный исследовательский Новосибирский государственный университет (НГУ); Федеральный исследовательский центр «Институт цитологии и генетики» Сибирского отделения Российской академии наук (ФИЦ ИЦиГ СО РАН)
Россия

Локтев Валерий Борисович, д-р биол. наук, профессор, зав. отделом

630559, Новосибирская область, р.п. Кольцово

630090, г. Новосибирск, ул. Пирогова, 2

630090, г. Новосибирск, пр. Лаврентьева, 10



Список литературы

1. Atif F.A. Anaplasma marginale and Anaplasma phagocytophilum: Rickettsiales pathogens of veterinary and public health significance. Parasitol. Res. 2015; 114 (11): 3941–3957. DOI: 10.1007/s00436-015-4698-2.

2. Stuen S. Anaplasma phagocytophilum – the most widespread tick-borne infection in animals in Europe. Vet. Res. Commun. 2007; 31 Suppl. 1: 79–84. DOI: 10.1007/s11259-007-0071-y.

3. Grova L., Olesen I., Steinshamn H., Stuen S. Prevalence of Anaplasma phagocytophilum infection and effect on lamb growth. Acta Vet. Scand. 2011; 53: 30. DOI: 10.1186/1751-0147-53-30.

4. Truchan H.K., Seidman D., Carlyon J.A. Breaking in and grabbing a meal: Anaplasma phagocytophilum cellular invasion, nutrient acquisition, and promising tools for their study. Microbes Infect. 2013; 15 (14–15): 1017–1025. DOI: 10.1016/j.micinf.2013.10.010.

5. Schaff U.Y., Trott K.A., Chase S., Tam K., Johns J.L. Neutrophils exposed to A. phagocytophilum under shear stress fail to fully activate, polarize, and transmigrate across inflamed endothelium. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2010; 299 (1): 87–96. DOI: 10.1152/ajpcell.00165.2009.

6. Loewenich F.D., Scorpio D.G., Reischl U., Dumler J.S., Bogdan C. Frontline: control of Anaplasma phagocytophilum, an obligate intracellular pathogen, in the absence of inducible nitric oxide synthase, phagocyte NADPH oxidase, tumor necrosis factor, Toll-like receptor (TLR) 2 and TLR4, or TLR adaptor molecule MyD 88. Eur. J. Immunol. 2000; 34 (7): 1789–1797.

7. Ohashi N., Gaowa W., Kawamori F., Wu D., Yoshikawa Y. Human granulocytic Anaplasmosis, Japan. Emerg. Infect. Dis. 2013; 19 (2): 289–292. DOI: 10.3201/eid1902.120855.

8. Brouqui P., Bacellar F., Baranton G. Guidelines for the diagnosisof tick-borne bacterial diseases in Europe. Clin. Microbiol. Infect. 2004; 10 (12): 1108–1132. DOI: 10.1111/j.1469-0691.2004.01019.x

9. Strle F. Human granulocytic ehrlichiosis in Europe. Int. J. Med. Microbiol. 2004; 293 Suppl. 37: 27–35. DOI: 10.1016/s1433-1128(04)80006-8.

10. Сидельников Ю.Н., Медянников О.Ю., Иванов Л.И., Çдановская Н.И. Первый случай гранулоцитарного эрлихиоза на Дальнем Востоке Российской Федерации. Клин. мед. 2003; 81 (2): 67–68.

11. Леонова Г.Н., Ястребов В.К., Хазова Т.Г., Шерстнева М.Б., Шпынов С.Н., Егорова Н.В., Рудаков И.В., Федянин А.П. Новые данные о выявлении эрлихий и анапалазм в иксодовых клещах в России и Казахстане. Мед. паразитол. 2004; 2: 10–14.

12. Чаусов Е.В., Терновой В.А., Протопопова Е.В., Коновалова С.Н., Кононова Ю.В. Генетическое разнообразие инфекционных агентов, переносимых иксодовыми клещами в г. Томске и его пригородах. Паразитология. 2009; 43 (5): 374–388.

13. Rar V.A., Livanova N.N., Panov V.V., Doroschenko E.K. Genetic diversity of Anaplasma and Ehrlichia in Asian part of Russia. Ticks Tick Borne Dis. 2010; 1 (1): 57–65. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2010.01.002.

14. Sumner J.W., Nicholson W.L., Massung R.F. PCR amplificationand comparison of nucleotide sequences from the groESL heatshock operon of Ehrlichia species. J. Clin. Microbiol. 1997; 35 (8): 2087–2092.

15. Liz J.S., Anderes L., Sumner J.W., Massung R.F. PCR detection of granulocytic ehrlichiae in Ixodes ricinus ticks and wild small mammals in western Switzerland. J. Clin. Microbiol. 2000; 38 (3): 1002–1007.

16. Burland T.G. DNASTAR’s Lasergene sequence analysis software. Methods Mol. Biol. 2000; 132: 71–91. DOI: 10.1385/1-59259-192-2:71.

17. Okonechnikov K., Golosova O., Fursov M. Unipro UGENE: a unified bioinformatics toolkit. Bioinformatics. 2012; 28 (8): 1166–1167. DOI: 10.1093/bioinformatics/bts091.

18. Tamura K., Dudley J., Nei M., Kumar S. MEGA4: Molecular Evolutionary Genetics Analysis (MEGA) software version 4.0. Mol. Biol. Evol. 2007; 24 (8): 1596–1599. DOI: 10.1093/molbev/msm092.

19. Романенко В.Н. Мониторинг видового состава и численности иксодовых клещей (Parasitiformes: Ixodidae) в антропургических биотопах. Вестн. Том. гос. унта. 2009; 324: 376–379.

20. Панкина Т.М., Романенко В.Н., Истраткина С.В., Шихин А.В., Полторацкая Т.Н. Акарологическая ситуация юга Томской области. Вестн. Том. гос. ун-та. Биология. 2013; 4 (24): 67–76.

21. Rymaszewska A. Divergence within the marker region of the groESL operon in Anaplasma phagocytophilum. Eu. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2008; 27 (11): 1025–1036. DOI: 10.1007/s10096-008-0539-x.

22. Rar V.A., Epikhina T.I., Livanova N.N., Panov V.V., Doroschenko E.K., Pukhovskaya N.M., Vysochina N.P., Ivanov L.I. Genetic variability of Anaplasma phagocytophilum in Ixodes persulcatus ticks and small mammals in the Asian part of Russia. Vector Borne Zoonotic Dis. 2011; 11 (8): 1013–1021. DOI: 10.1089/vbz.2010.0266.


Для цитирования:


Карташов М.Ю., Микрюкова Т.П., Москвитина Н.С., Кривошеина Е.И., Кузнецов А.И., Романенко В.Н., Большакова Н.П., Терновой В.А., Локтев В.Б. Обнаружение и генотипирование Anaplasma phagocytophilum в клещах I. persulcatus и D. reticulatus , собранных в г. Томске в 2015–2016 гг. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(2):89-98. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-2-89-98

For citation:


Kartashov M.Y., Mikryukova T.P., Moskvitina N.S., Krivosheina E.I., Kuznetsov A.I., Romanenko V.N., Bol’shakova N.P., Ternovoi V.A., Loktev V.B. Detection and genotyping of Anaplasma phagocytophilum in I. persulcatus and D. reticulatus ticks collected in Tomsk (Western Siberia) in 2015–2016 Bulletin of Siberian Medicine. 2019;18(2):89-98. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-2-89-98

Просмотров: 22


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1682-0363 (Print)
ISSN 1819-3684 (Online)