Preview

Бюллетень сибирской медицины

Расширенный поиск

Влияние гипертрофии больших слюнных желез на ультраструктуру сперматогенного эпителия крыс

https://doi.org/10.20538/1682-0363-2020-3-29-35

Полный текст:

Аннотация

Цель. Выяснение особенностей эндокринного влияния больших слюнных желез на сперматогенез половозрелых крыс.

Материалы и методы. Половозрелые белые беспородные самцы крыс (возраст 2 мес, масса тела (153 ± 18) г) составили три группы (по 30 особей): интактная, контрольная и крысы, подвергшиеся многократной ампутации резцов. Для оценки эндокринного  влияния эпителиоцитов ацинусов и протоков больших слюнных желез моделировали их гипертрофию путем многократной ампутации резцов. Крыс выводили из эксперимента на 2-, 3-, 4-, 6-, 8- и 10-ю нед после первой ампутации резцов. Семенники животных оценивали при помощи трансмиссионной электронной микроскопии. На электронограммах анализировали удельный объем вакуолизации цитоплазмы сустентоцитов, сперматогоний, сперматоцитов и сперматид (усл. ед.), в сперматогенных клетках оценивали количество митохондрий (%) с морфологическими признаками набухания.

Результаты. В ранние сроки эксперимента в извитых семенных канальцах крыс развивается вакуолизация цитоплазмы сустентоцитов, а также ультраструктурные изменения сперматогенных клеток (вакуолизация цитоплазмы, альтерация митохондрий, разрушение мембранных органелл, фрагментация хроматина). Изменения структуры  сперматогенных клеток и сустентоцитов максимально выражен на 2–3-й нед, снижаются  на 4-й нед и полностью нивелируются к 6-й нед эксперимента.

Заключение. Гипертрофия больших слюнных желез, вызванная многократной  ампутацией резцов, оказывает на сперматогенный эпителий влияние, схожее с эффектом сиалоаденэктомии. В результате многократной ампутации резцов угнетается  функциональное состояние клеток гранулярных извитых трубок поднижнечелюстных желез. Эндокринные факторы, которые вносят наибольший вклад в регуляцию  сперматогенеза у крыс, вырабатываются клетками гранулярных извитых трубок.

Об авторах

В. В. Иванова
Сибирский государственный медицинский университет (СибГМУ)
Россия

ассистент, кафедра морфологии и общей патологии

Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2



Д. И. Тихонов
Сибирский государственный медицинский университет (СибГМУ)
Россия

студент VI курса

Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2



И. В. Мильто
Сибирский государственный медицинский университет (СибГМУ); Северский биофизический научный центр
Россия

д-р биол. наук, доцент, кафедра морфологии и общей патологии; зав. отделом молекулярной и клеточной радиобиологии

Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2

Россия, 636013, Томская обл., г. Северск-13, а/я № 130



О. Н. Серебрякова
Норильская городская больница № 2
Россия

врач, отделение клинической лабораторной диагностики

Россия, 663300, г. Норильск, ул. Б. Хмельницкого, 18



Е. А. Геренг
Сибирский государственный медицинский университет (СибГМУ)
Россия

д-р мед. наук, доцент, профессор кафедры морфологии и общей патологии

Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2



Р. И. Плешко
Сибирский государственный медицинский университет (СибГМУ)
Россия

д-р медицинских наук, профессор, профессор кафедры морфологии и общей патологии

ORCID 0000-0001-8845-2086

Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2



Список литературы

1. Perez P., Rowzee A.M., Zheng C., Adriaansen J., Baum B.J. Salivary epithelial cells: an unassuming target site for gene therapeutics. Int. J. Biochem. Cell. Biol. 2010; 42 (6): 773–777. DOI: 10.1016/j.biocel.2010.02.012.

2. Сукманский О.И. Биологически активные вещества слюнных желез. Киев: Здоровье, 1991: 112.

3. Иванова В.В., Мильто И.В., Суходоло И.В., Усов В.Ю. Влияние сиалоаденэктомии на становление сперматогенеза у крыс: ультраструктурная характеристика сперматогенного эпителия и клеток Лейдига. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2018; 166 (12): 773–777.

4. Афанасьев В.В., Калинченко С.Ю., Винокурова О.Ю., Ордашев Х.А., Дамадаев М.М. Состояние слюнных желез у больных гипогонадизмом. Российский стоматологический журнал. 2017; 21 (3): 137–140. DOI: 10.18821/1728-2802-2017-21-3-137-140.

5. Wells H., Zackin S.J., Goldhaber P., Munson P.L. Increase in weight of the submandibular salivary glands of rats following periodic amputation of the erupted portion of the incisor teeth. Am. J. Physiol. 1959; 196: 827–830. DOI: 10.1152/ajplegacy.1959.196.4.827.

6. Sun M.G., Williams J., Munoz-Pinedo C., Perkins G.A., Brown J.M., Ellisman M.H., Green D.R., Frey T.G. Correlated three-dimensional light and electron microscopy reveals transformation of mitochondria during apoptosis. Nat. Cell Biol. 2007; 9 (9): 1057–1065. DOI: 10.1038/ncb1630.

7. Rougeot С., Rosinski-Chupin I., Mathison R. Rodent submandibular gland peptide hormones and other biologically active peptides. Peptides. 2000; 21 (3): 443–455. DOI: 10.1016/s0196-9781(00)00158-3.

8. Mori M., Sumitomo S., Shrestha P., Tanaka S., Takai Y., Shikimori M. Multifunctional roles of growth factors or biologically active peptides in salivary glands and saliva. Oral Medicine & Pathology. 2008; 12 (4): 115–123. DOI: 10.3353/omp.12.115.

9. Иванова В.В., Мильто И.В., Суходоло И.В. Морфофункциональное состояние эпителиоцитов поднижнечелюстных слюнных желез на фоне многократной ампутации резцов у половозрелых крыс. Бюллетень сибирской медицины. 2018; 17 (1): 53–58. DOI: 10.20538/1682-0363-2018-1-53-58.

10. Creasy D.M. Pathogenesis of male reproductive toxicity. Toxicol. Pathol. 2001; 29 (1): 64–76. DOI: 10.1080/019262301301418865.

11. Creasy D., Bube A., de Rijk E., Kandori H., Kuwahara M., Masson R., Nolte T., Reams R., Regan K., Rehm S., Rogerson P.,Whitney K. Proliferative and nonproliferative lesions of the rat and mouse male reproductive system. Toxicol. Pathol. 2012; 40 (6): 40–121. DOI: 10.1177/ 0192623312454337.

12. Franсa L.R., Hess R.A., Dufour J.M., Hofmann M.C., Griswold M.D. The Sertoli cell: one hundred fifty years of beauty and plasticity. Andrology. 2016; 4 (2): 189–212. DOI: 10.1111/andr.12165.

13. Amaral А., Lourenсo B., Marques M., Ramalho-Santos J. Mitochondria functionality and sperm quality. Reproduction. 2013; 146 (5): 163–174. DOI: 10.1530/REP-13-0178.

14. Lemus L., Goder V. Regulation of endoplasmic reticulum associated protein degradation (ERAD) by ubiquitin. Cells. 2014; 3 (3): 824–847. DOI: 10.3390/cells3030824.

15. Shubin A.V., Demidyuk I.V., Komissarov A.A., Rafieva L.M., Kostrov S.V. Cytoplasmic vacuolization in cell death and survival. Oncotarget. 2016; 7 (34): 55863–55898. DOI: 10.18632/oncotarget.10150.


Для цитирования:


Иванова В.В., Тихонов Д.И., Мильто И.В., Серебрякова О.Н., Геренг Е.А., Плешко Р.И. Влияние гипертрофии больших слюнных желез на ультраструктуру сперматогенного эпителия крыс. Бюллетень сибирской медицины. 2020;19(3):29-35. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2020-3-29-35

For citation:


Ivanova V.V., Тikhonov D.I., Mil’to I.V., Serebrjakova O.N., Gereng E.A., Pleshko R.I. The effect of major salivary glands hypertrophy on rat’s spermatogenic epithelium ultrastructure. Bulletin of Siberian Medicine. 2020;19(3):29-35. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2020-3-29-35

Просмотров: 99


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1682-0363 (Print)
ISSN 1819-3684 (Online)