Preview

Бюллетень сибирской медицины

Расширенный поиск

Роль миокинов в регуляции энергетического обмена

https://doi.org/10.20538/1682-0363-2012-3-173-178

Полный текст:

Аннотация

Представлены новые данные в отношении полифункциональности мышечной системы. Показано, что мышцы способны синтезировать и секретировать миокины, обладающие аутопара-и эндокринными эффектами. Представлен сигнальный каскад, запускающий транскрипцию интерлейкина-6 (ИЛ-6) в скелетных мышцах. На примере ИЛ-6 как важного миокина показаны его метаболические и антивоспалительные эффекты при физических нагрузках. Рассмотрен вопрос о специфичности цитокинового ответа при сокращении мышц. При эндотоксемии, индуцированной введением липополисахарида, мышцы начинают продуцировать как ИЛ-6, так и фактор некроза опухолей α (ФНО-α). Биологический смысл нарастания продукции ИЛ-6 и других миокинов заключается в том, что миокины являются системой коммуникации, подающие сигнал различным органам и системам, в первую очередь печени, жировой ткани, иммунной и эндокринной, подчиняющих их работу требованиям длительно сокращающихся мышц.

Список литературы

1. Березина А.В., Беляева О.Д., Баженова Е.А. и др. Особенности окисления жиров при физических нагрузках различной интенсивности у больных абдоминальным ожирением // Пробл. эндокринологии. 2010. № 56. (2). С. 20—26.

2. Донников А.Е., Шкурников М.Ю., Акимов Е.Б. и др. Влияние шестичасового ультрамарафона на уровень IL-6, LIF и SCF // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2009. Т. 148, № 11. С. 573—575.

3. Сахаров Д.А., Тевис М., Тоневицкий А.Г. Анализ основных изоформ гормона роста человека до и после интенсивных физических нагрузок // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2008. Т. 146, № 10. С. 446—450.

4. Щербаков В.И., Поздняков И.М. Изучение некоторых показателей иммунитета при разгрузочно-диетической терапии // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2004. № 12. С. 638—640.

5. Borge B.A.S., Kalland K.H., Olsen S. et al. Cytokines are produced locally by myocytes in rat skeletal muscle during endotoxemia // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2009. 296. H735—H744.

6. Broholm C., Mortensen O.H., Nielsen S. et al. Exercise in-duces expression of leukaemia inhibitory factor in human skeletal muscle // J. Physiol. 2008. 586. 2195—2201.

7. Coker R.H., Simonsen L., Bulow J. et al. Stimulation of splanchnic glucose production during exercise in human contains a glucagon-independent component // Am. J. Physiol. 2001. 280. E918—E927.

8. Cryer P.E. Glucose counterregulation: prevention and cor-rection of hypoglycemia in humans // Am. J. Physiol. 1993. 264. E149—E155.

9. Du M., Yan X., Tong J.F. et al. Maternal obesity, inflamma-tion, and fetal skeletal muscle development // Biol. Reprod. 2010. 82. 4—12.

10. Febbraio M.A., Pedersen B.K. Muscle-derived interleukin-6: mechanisms for activation and possible biological roles // FASEB J. 2002. 16. 1335—1347.

11. Fosgerau K., Galle P., Hansen T. et al. Interleukin-6 autoantibodies are involved in the pathogenesis of a subset of type 2 diabetes // J. Endocrinol. 2010. V. 204. Р. 265—273.

12. Frisard M.I., McMillan R.P., Marchand J. et al. Toll-like receptor 4 modulates skeletal muscle substrate metabolism // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2010. 298. E988—E998.

13. Hayashi T., Wojtaszewski J.F.P., Goodyear L.J. Exercise regulation of glucose transport in skeletal muscle // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 1997. 273. E1039—E1051.

14. Haugen F., Norheim F., Lian H. et al. IL-7 is expressed and secreted by human skeletal muscle cells // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2010. 298. Р. 807—C.816.

15. Howlett K., Febbraio M., Hargreaves M. Glucose produc-tion during strenuous exercise in humans: role of epinephrine // Am. J. Physiol. 1999. 276. E1130—E1135.

16. Kramer H.F., Goodyear L.J. Exercise, MAPK, and NF-kB signaling in skeletal muscle // J. Appl. Physiol. 2007. 103. Р. 388—395.

17. Lima-Cabello E., Cuevas M.J., Garatachea N. et al. Eccentric exercise induces nitric oxide synthase expression through nuclear factor-kB modulation in rat skeletal muscle // J. Appl. Physiol. 2010. 108. Р. 578—583.

18. Lira V.A., Soltow Q.A., LongJ.H.D. et al. Nitric oxide in-creases GLUT4 expression and regulates AMPK signaling in skeletal muscle // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2007. 293. E1062—E1068.

19. Lund S., Holman G.D., Schmitz O., Pedersen O. Contrac-tion stimulates translocation of glucose transporter GLUT4 in skeletal muscle through a mechanism distinct from that of insulin // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. 92. Р. 5817—5821.

20. McConell G.K., Bradley S.J., Stephens T.J. et al. Skeletal muscle nNOS protein content is increased by exercise training in humans // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2007. 293. R821—R828.

21. McConell G.K., Huynh N.N., Lee-Young R.S. et al. L-arginine infusion increases glucose clearance during prolonged exercise in humans // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2006. 290. E.60—E.66.

22. Nielsen A.R., Mounier R., Plomgaard P. et al. Expression of interleukin-15 in human skeletal muscle-effect of exercise and muscle fibre type composition // J. Physiol. 2007. 584. Р. 305—312.

23. Nieto-Vazquez I., Fernandez-Veledo S., de Alvaro C., Lo-renzo M. Dual role of interleukin-6 in regulating insulin sen-sitivity in murine skeletal muscle // Diabetes. 2008. 57. Р. 3211—3221.

24. Pedersen B.K., Akerstrom T.C.A., Nielsen A.R., Fischer C.P. Role of myokines in exercise and metabolism // J. Appl. Physiol. 2007. 103. Р. 1093—1098.

25. Pedersen B.K., Febbraio M.A. Muscle as an endocrine or-gan: focus on muscle-derived interleukin-6 // Physiol. Rev. 2008. 88. Р. 1379—1406.

26. Petersen A.M., Pedersen B.K. The anti-inflammatory effect of exercise // J. Appl. Physiol. 2005. 98. Р. 1154—1162.

27. Reina S.M., Ghosh S., Tantiwong P. et al. Elevated toll-like receptor 4 expression and signaling in muscle from insulin-resistant subjects // Diabetes. 2008. 57. Р. 2595—2602.

28. Sakamoto K., Holman G.D. Emerging role for AS160/TBC1D4 and TBC1D1 in the regulation of GLUT4 traffic // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2008. 295. E29—E37.

29. Sandstrom M.E., Zhang S.J., Bruton J. et al. Role of reac-tive oxygen species in contraction-mediated glucose transport in mouse skeletal muscle // J. Physiol. 2006. 575. Р. 251—262.

30. Starkie R., Ostrowski S.R., Jauffred S. et al. Exercise and IL-6 infusion inhibit endotoxin-induced TNF-a production in humans // FASEB J. 2003. 17. 884—886.

31. Steensberg A., Fischer C.P., Keller C. et al. IL-6 enhances plasma IL-ra,IL-10, and cortisol in humans // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2003. 285. E433—E437.

32. Tsigos C., Papanicolaou D.A., Kyrou I. et al. Dose-dependent effects of recombinant human interleukin-6 on glucose regulation // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1997. 82. Р. 4167—4170.


Для цитирования:


Щербаков В.И., Скосырева Г.А., Рябиченко Т.И. Роль миокинов в регуляции энергетического обмена. Бюллетень сибирской медицины. 2012;11(3):173-178. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2012-3-173-178

For citation:


Scherbakov V.I., Skosyreva G.A., Ryabichenko T.I. Role of myokines in regulation of a power exchange. Bulletin of Siberian Medicine. 2012;11(3):173-178. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2012-3-173-178

Просмотров: 845


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1682-0363 (Print)
ISSN 1819-3684 (Online)